ISSN 2518-1491 (Online), ISSN 2224-5286 (Print)
ҚАЗАҚСТАН РЕСПУБЛИКАСЫ ҰЛТТЫҚ ҒЫЛЫМ АКАДЕМИЯСЫНЫҢ
Д.В. Сокольский атындағы
«Жанармай, катализ жəне электрохимия институты» АҚ
Х А Б А Р Л А Р Ы
ИЗВЕСТИЯ N E W S
НАЦИОНАЛЬНОЙ АКАДЕМИИ НАУК OF THE ACADEMY OF SCIENCES РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН
OF THE REPUBLIC OF KAZAKHSTAN АО «Институт топлива, катализа и
JSC «D.V. Sokolsky institute of fuel,
электрохимии им. Д.В. Сокольского» catalysis and electrochemistry»
SERIES
CHEMISTRY AND TECHNOLOGY
2 (455)
APRIL – JUNE 2023
PUBLISHED SINCE JANUARY 1947
PUBLISHED 4 TIMES A YEAR
ALMATY, NAS RK Бас редактор:
ЖҰРЫНОВ Мұрат Жұрынұлы, химия ғылымдарының докторы, профессор, ҚР ҰҒА академигі, Қазақстан Республикасы Ұлттық ғылым академиясының президенті, АҚ «Д.В. Сокольский атындағы отын, катализ жəне электрохимия институтының» бас директоры (Алматы, Қазақстан) H = 4
Редакция алқасы:
ƏДЕКЕНОВ Серғазы Мыңжасарұлы (бас редактордың орынбасары), химия ғылымдарының докторы, профессор, ҚР ҰҒА академигі, «Фитохимия» Халықаралық ғылыми-өндірістік холдингінің директоры (Қарағанды, Қазақстан) H = 11
АГАБЕКОВ Владимир Енокович (бас редактордың орынбасары), химия ғылымдарының докторы, профессор, Беларусь ҰҒА академигі, Жаңа материалдар химиясы институтының құрметті директоры (Минск, Беларусь) H = 13
СТРНАД Мирослав, профессор, Чехия ғылым академиясының Эксперименттік ботаника институтының зертхана меңгерушісі (Оломоуц, Чехия) H = 66
БҮРКІТБАЕВ Мұхамбетқали, химия ғылымдарының докторы, профессор, ҚР ҰҒА академигі, əл- Фараби атындағы ҚазҰУ-дың бірінші проректоры (Алматы, Қазақстан) H = 11
ХОХМАНН Джудит, Сегед университетінің Фармацевтика факультетінің Фармакогнозия кафедрасының меңгерушісі, Жаратылыстану ғылымдарының пəнаралық орталығының директоры (Сегед, Венгрия) H = 38
РОСС Самир, PhD докторы, Миссисипи университетінің Өсімдік өнімдерін ғылыми зерттеу ұлттық орталығы, Фармация мектебінің профессоры (Оксфорд, АҚШ) H = 35
ХУТОРЯНСКИЙ Виталий, философия докторы (PhD, фармацевт), Рединг университетінің профессоры (Рединг, Англия) H = 40
ТЕЛТАЕВ Бағдат Бұрханбайұлы, техника ғылымдарының докторы, профессор, ҚР ҰҒА корреспондент-мүшесі, Қазақстан Республикасы Индустрия жəне инфрақұрылымдық даму министрлігі (Алматы, Қазақстан) H = 13
ФАРУК Асана Дар, Хамдар аль-Маджида Шығыс медицина колледжінің профессоры, Хамдард университетінің Шығыс медицина факультеті (Карачи, Пəкістан) H = 21
ФАЗЫЛОВ Серік Драхметұлы, химия ғылымдарының докторы, профессор, ҚР ҰҒА академигі, Органикалық синтез жəне көмір химиясы институты директорының ғылыми жұмыстар жөніндегі орынбасары (Қарағанды, Қазақстан) H = 6
ЖОРОБЕКОВА Шарипа Жоробекқызы, химия ғылымдарының докторы, профессор, Қырғызстан ҰҒА академигі, ҚР ҰҒА Химия жəне химиялық технология институты (Бішкек, Қырғызстан) H = 4
ХАЛИКОВ Джурабай Халикович, химия ғылымдарының докторы, профессор, Тəжікстан ҒА академигі, В.И. Никитин атындағы Химия институты (Душанбе, Тəжікстан) H = 6
ФАРЗАЛИЕВ Вагиф Меджидоглы, химия ғылымдарының докторы, профессор, ҰҒА академигі (Баку, Əзірбайжан) H = 13
ГАРЕЛИК Хемда, философия докторы (PhD, химия), Халықаралық таза жəне қолданбалы химия одағының Химия жəне қоршаған орта бөлімінің президенті (Лондон, Англия) H = 15
«ҚР ҰҒА Хабарлары. Химия жəне технология сериясы»
ISSN 2518-1491 (Online), ISSN 2224-5286 (Print)
Меншіктенуші: «Қазақстан Республикасының Ұлттық ғылым академиясы» РҚБ (Алматы қ.).Қазақстан Республикасының Ақпарат жəне қоғамдық даму министрлiгiнің Ақпарат комитетінде 29.07.2020 ж.
берілген № KZ66VPY00025419 мерзімдік басылым тіркеуіне қойылу туралы куəлік.
Тақырыптық бағыты: органикалық химия, бейорганикалық химия, катализ, электрохимия жəне коррозия, фармацевтикалық химия жəне технологиялар.
Мерзімділігі: жылына 4 рет.
Тиражы: 300 дана.
Редакцияның мекен-жайы: 050010, Алматы қ., Шевченко көш., 28, 219 бөл., тел.: 272-13-19 http://chemistry- technology.kz/index.php/en/arhiv
© Қазақстан Республикасының Ұлттық ғылым академиясы, 2023 Редакцияның мекенжайы: 050100, Алматы қ., Қонаев к-сі, 142, «Д.В. Сокольский атындағы отын, катализ жəне электрохимия институты» АҚ, каб. 310, тел. 291-62-80, факс 291-57-22, e-mаil:[email protected] Типографияның мекен-жайы: «Аруна» ЖК, Алматы қ., Мұратбаев көш., 75.
Главный редактор:2
Volume 2, Number 455 (2023) ЖУРИНОВ Мурат Журинович, доктор химических наук, профессор, академик НАН РК, президент Национальной академии наук Республики Казахстан, генеральный директор АО «Институт топлива, катализа и электрохимии им. Д.В. Сокольского» (Алматы, Казахстан) H = 4
Редакционная коллегия:
АДЕКЕНОВ Сергазы Мынжасарович (заместитель главного редактора), доктор химических наук, профессор, академик НАН РК, директор Международного научно-производственного холдинга
«Фитохимия» (Караганда, Казахстан) H = 11
АГАБЕКОВ В ладимир Енокович (заместитель главного редактора), доктор химических наук, профессор, академик НАН Беларуси, почетный директор Института химии новых материалов (Минск, Беларусь) H = 13
СТРНАД Мирослав, профессор, заведующий лабораторией института Экспериментальной ботаники Чешской академии наук (Оломоуц, Чехия) H = 66
БУРКИТБАЕВ Мухамбеткали, доктор химических наук, профессор, академик НАН РК, Первый проректор КазНУ имени аль-Фараби (Алматы, Казахстан) H = 11
ХОХМАНН Джудит, заведующий кафедрой Фармакогнозии Фармацевтического факультета Университета Сегеда, директор Междисциплинарного центра естественных наук (Сегед, Венгрия) H = 38 РОСС Самир, доктор PhD, профессор Школы Фармации национального центра научных исследований растительных продуктов Университета Миссисипи (Оксфорд, США) H = 35
ХУТОРЯНСКИЙ Виталий, доктор философии (Ph.D, фармацевт), профессор Университета Рединга (Рединг, Англия) H = 40
ТЕЛЬТАЕВ Багдат Бурханбайулы, доктор технических наук, профессор, член-корреспондент НАН РК, Министерство Индустрии и инфраструктурного развития Республики Казахстан (Алматы, Казахстан) H = 13
ФАРУК Асана Дар, профессор колледжа Восточной медицины Хамдарда аль-Маджида, факультет Восточной медицины университета Хамдарда (Карачи, Пакистан) H = 21
ФАЗЫЛОВ Серик Драхметович, доктор химических наук, профессор, академик НАН РК, заместитель директора по научной работе Института органического синтеза и углехимии (Караганда, Казахстан) H = 6
ЖОРОБЕКОВА Шарипа Жоробековна, доктор химических наук, профессор, академик НАН Кыргызстана, Институт химии и химической технологии НАН КР (Бишкек, Кыргызстан) H = 4 ХАЛИКОВ Джурабай Халикович, доктор химических наук, профессор, академик АН Таджикистана, Институт химии имени В.И. Никитина АН РТ (Душанбе, Таджикистан) H = 6 ФАРЗАЛИЕВ Вагиф Меджид оглы, доктор химических наук, профессор, академик НАНА (Баку, Азербайджан) H = 13
ГАРЕЛИК Хемда, доктор философии (Ph.D, химия), президент Отдела химии и окружающей среды Международного союза чистой и прикладной химии (Лондон, Англия) H = 15
«Известия НАН РК. Серия химии и технологий».
ISSN 2518-1491 (Online), ISSN 2224-5286 (Print)
Собственник: Республиканское общественное объединение «Национальная академия наук Республики Казахстан»
(г. Алматы).
Свидетельство о постановке на учет периодического печатного издания в Комитете информации Министерства информации и общественного развития Республики Казахстан № KZ66VPY00025419, выданное 29.07.2020 г.
Тематическая направленность: органическая химия, неорганическая химия, катализ, электрохимия и коррозия, фармацевтическая химия и технологии.
Периодичность: 4 раз в год.
Тираж: 300 экземпляров.
Адрес редакции: 050010, г. Алматы, ул. Шевченко, 28, оф. 219, тел.: 272-13-19 http://chemistry- technology.kz/index.php/en/arhiv
© Национальная академия наук Республики Казахстан, 2023 Адрес редакции: 050100, г. Алматы, ул. Кунаева, 142, АО «Институт топлива, катализа и электрохимии им. Д.В.
Сокольского», каб. 310, тел. 291-62-80, факс 291-57-22, e-mаil:[email protected] Адрес типографии: ИП «Аруна», г.
Алматы, ул. Муратбаева, 75.
Editor in chief:3
ZHURINOV Murat Zhurinovich, doctor of chemistry, professor, academician of NAS RK, president of NAS RK, general director of JSC “Institute of fuel, catalysis and electrochemistry named after D.V. Sokolsky (Almaty, Kazakhstan) H = 4
Editorial board:
ADEKENOV Sergazy Mynzhasarovich (deputy editor-in-chief) doctor of chemical sciences, professor, academician of NAS RK, director of the international Scientific and production holding «Phytochemistry»
(Karaganda, Kazakhstan) H = 11
AGABEKOV Vladimir Enokovich (deputy editor-in-chief), doctor of chemistry, professor, academician of NAS of Belarus, honorary director of the Institute of Chemistry of new materials (Minsk, Belarus) H = 13
STRNAD Miroslav, head of the laboratory of the institute of Experimental Botany of the Czech academy of sciences, professor (Olomouc, Czech Republic) H = 66
BURKITBAYEV Mukhambetkali, doctor of chemistry, professor, academician of NAS RK, first vice- rector of al-Farabi KazNU (Almaty, Kazakhstan) H = 11
HOHMANN Judith, head of the department of pharmacognosy, faculty of Pharmacy, university of Szeged, director of the interdisciplinary center for Life sciences (Szeged, ungary) H = 38
ROSS Samir, Ph.D, professor, school of Pharmacy, national center for scientific research of Herbal Products, University of Mississippi (Oxford, USA) H = 35
KHUTORYANSKY Vitaly, Ph.D, pharmacist, professor at the University of Reading (Reading, England) H = 40
TELTAYEV Bagdat Burkhanbayuly, doctor of technical sciences, professor, corresponding member of NAS RK, ministry of Industry and infrastructure development of the Republic of Kazakhstan (Almaty, Kazakhstan) H = 13
PHARUK Asana Dar, professor at Hamdard al-Majid college of Oriental medicine. faculty of Oriental medicine, Hamdard university (Karachi, Pakistan) H = 21
FAZYLOV Serik Drakhmetovich, doctor of chemistry, professor, academician of NAS RK, deputy director for institute of Organic synthesis and coal chemistry (Karaganda, Kazakhstan) H = 6
ZHOROBEKOVA Sharipa Zhorobekovna, doctor of chemistry, professor, academician of NAS of Kyrgyzstan, Institute of Chemistry and chemical technology of NAS KR (Bishkek, Kyrgyzstan) H = 4
KHALIKOV Jurabay Khalikovich, doctor of chemistry, professor, academician of the academy of sciences of tajikistan, institute of Chemistry named after V.I. Nikitin AS RT (Tajikistan) H = 6
FARZALIEV Vagif Medzhid ogly, doctor of chemistry, professor, academician of NAS of Azerbaijan (Azerbaijan) H = 13
GARELIK Hemda, PhD in chemistry, president of the department of Chemistry and Environment of the International Union of Pure and Applied Chemistry (London, England) H = 15
News of the National Academy of Sciences of the Republic of Kazakhstan. Series of chemistry and technology. ISSN 2518-1491 (Online),
ISSN 2224-5286 (Print)
Owner: RPA «National Academy of Sciences of the Republic of Kazakhstan» (Almaty).
The certificate of registration of a periodical printed publication in the Committee of information of the Ministry of Information and Social Development of the Republic of Kazakhstan No. KZ66VPY00025419, issued 29.07.2020.
Thematic scope: organic chemistry, inorganic chemistry, catalysis, electrochemistry and corrosion, pharmaceutical chemistry and technology.
Periodicity: 4 times a year.
Circulation: 300 copies.
Editorial address: 28, Shevchenko str., of. 219, Almaty, 050010, tel. 272-13-19 http://chemistry- technology.kz/index.php/en/arhiv
© National Academy of Sciences of the Republic of Kazakhstan, 2023 Editorial address: JSC «D.V. Sokolsky institute of fuel, catalysis and electrochemistry», 142, Kunayev str., of. 310, Almaty, 050100, tel. 291-62-80, fax 291-57-22, e-mаil: [email protected] Address of printing house: ST «Aruna», 75, Muratbayev str, Almaty.
4
Volume 2, Number 455 (2023) NEWS
OF THE NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES OF THE REPUBLIC OF KAZAKHSTAN SERIES CHEMISTRY AND TECHNOLOGY
ISSN 2224–5286
Volume 2. Number 455 (2023), 33–42 https://doi.org/10.32014/2023.2518-1491.161 UDK 547.99. IRSTI 61.45.36
© M.D. Dauletova1*, A.K. Umbetova1, G.S. Burasheva1, M.I. Chaudhari2, 2023
1Al-Farabi Kazakh National University, Kazakhstan, Almaty;
2Pakistan, Karachi, University of Karachi.
Е-mail: [email protected]
COMPARATIVE STUDY OF THE ACID COMPOSITION OF KAZAKH PLANT SPECIES OF THE GENUS ATRAPHAXIS
Dauletova M.D. ― PhD student, Faculty of Chemistry and Chemical Technologies, Al-Farabi Kazakh National University. Al-Farabi 71, 050040 Almaty, Kazakhstan
Е-mail: [email protected], https://orcid.org/ 0009-0004-0969-6056;
Umbetova A.K. ― PhD, Senior Lecturer, Faculty of Chemistry and Chemical Technologies, Al-Farabi Kazakh National University. Al-Farabi 71, 050040 Almaty, Kazakhstan
E-mail: [email protected] , https://orcid.org/0000-0001-9879-5398;
Burasheva G.Sh. ― Doctor of Chemical Sciences, Professor, Faculty of Chemistry and Chemical Technologies, Al-Farabi Kazakh National University. Al-Farabi 71, 050040 Almaty, Kazakhstan
Е-mail: [email protected], https://orcid.org/0000-0003-2935-3531;
Chaudhary M. ― Iqbal-professor. International Center for Chemical and Biological Sciences, Karachi University, 75270 Karachi, Pakistan
Е-mail: [email protected], https://orcid.org/0000-0001-5356-3585.
Abstract. This article presents the results of a quantitative determination of the amino acid and fatty acid composition in the aerial parts of plants of the genus Atraphaxis (Atraphaxis virgata, Atraphaxis pyrifolia, Atraphaxis spinosa, Atraphaxis muschketowii. Atraphaxis pungens), belonging to the Polyganaceae family, harvested in the Almaty region (Aksai Gorge, Bakanas district, Kokpek village). In five plant species of the genus Atraphaxis, by gas-liquid chromatography, it was found by quantitative content of 20 amino acids, of which 8 are essential. Among the identified amino acids, most belong to the aliphatic group, including those containing an oxy group and sulfur-containing compounds. g compounds.
In two plant species of the genus Atraphaxis (A.virgata, A.pyrifolia), the capillary electrophoresis method determined the quantitative content of 13 amino acids, of which 7 are essential. In A.pyrifolia, the mass fraction of protein was determined by the titrimetric method, by detecting the quantitative content of total nitrogen on the Kjeldahl apparatus. Quantitative content of fatty acids in the aboveground part of Atraphaxis plants (Atraphaxis virgata, Atraphaxis pyrifolia, Atraphaxis spinosa, Atraphaxis muschketowii. Atraphaxis pungens) was analyzed by gas-liquid chromatography. The content of 8 unsaturated fatty acids was obtained, where a relatively high content of oleic, linoleic and palmitic acid is manifested (C18:1, C18:2 and C16:0). Thus, it was revealed that unsaturated fatty acids predominate in the composition of vegetable raw materials. The analysis of the acid composition of raw materials was carried out by gas-liquid chromatography on the device "CARLO ERBA-4200" (Italy) and by electrophoresis on the capillary electrophoresis system "Drops".
Keywords: amino acids, fatty acids, curly hair, Polygonaceae, Atraphaxis, chromatography, electrophoresis
© М.Д. Даулетова1*, А.К. Үмбетова1, Г.Ш. Бурашева1, М.И. Чаудхари2, 2023
1Əл-Фараби атындағы Қазақ Ұлттық университеті, Алматы, Қазақстан;
2Карачи университеті, Карачи, Пакістан.
ATRAPHAXIS ТҰҚЫМДАС ҚАЗАҚСТАНДЫҚ ӨСІМДІК ТҮРЛЕРІНІҢ ҚЫШҚЫЛДЫҚ ҚҰРАМЫН САЛЫСТЫРМАЛЫ ЗЕРТТЕУ
Аннотация. Бұл мақалада Алматы облысында (Ақсай шатқалы, Бақанас ауданы, Көкпек ауылы) дайындалған Polygonaceae тұқымдасына жататын Аtraphaxis (Аtraphaxis virgata, Atraphaxis pyrifolia, Аtraphaxis spinosa, Atraphaxis muschketowii, Atraphaxis pungens) өсімдік түрлерінің жер үсті бөлігінің аминқышқылдары жəне май қышқылдары мөлшерінің сандық құрамын анықтау нəтижелері келтірілген. Atraphaxis тұқымдас бес өсімдік түрінен газ-сұйық хроматография əдісімен 20 аминқышқылының сандық құрамы анықталды, оның 8-і ағзадағы маңызды амин қышқылдарына жатады. Анықталған аминқышқылдарының көпшілігі алифаттық топқа жатады, соның ішінде құрамында окси тобы жəне құрамында күкірт бар қосылыстар. Atraphaxis (A. virgata, A. pyrifolia) тұқымдас өсімдіктің екі түрінде капиллярлық электрофорез əдісімен 13 амин қышқылының сандық құрамы анықталды, оның 7-і ағзадағы маңызды амин қышқылдарына жатады. A. pyrifolia өсімдік түрінен ақуыздың массалық үлесі Кьелдаль аппаратындағы жалпы азоттың сандық құрамын анықтау арқылы титриметриялық əдіспен анықталды. Atraphaxis (Atraphaxis virgata, Atraphaxis pyrifolia, atraphaxis spinosa, Atraphaxis muschketowii. Atraphaxis pungens) өсімдік түрінің жер үсті бөлігіндегі май қышқылдарының сандық құрамы газ-сұйық хроматография əдісімен анықталды.
Талдау нəтижелерінде 8 қанықпаған май қышқылының құрамы анықталды, онда олеин, линол жəне пальмитин қышқылының салыстырмалы түрде жоғары мөлшері бөлінді (C18:1, C18:2 жəне C16:0).
Осылайша, өсімдік шикізатының құрамында қанықпаған май қышқылдары басым екендігі анықталды. Шикізаттың қышқылдық құрамын талдау "Carlo ERBA-4200" (Италия) құрылғысында газ-сұйық хроматография əдісімен жəне "Капель"капиллярлық электрофорез жүйесінде электрофорез əдісімен жүзеге асырылды.
Түйін сөздер: амин қышқылдары, май қышқылдары, курчавка, Polyganaceae Atraphaxis, хромотография, электрофорез
© М.Д. Даулетова1*, А.К. Умбетова1, Г.Ш. Бурашева1, М.И. Чаудхари2, 2023
1Казахский национальный университет имени аль-Фараби, Казахстан, Алматы.
2Университет Карачи,Пакистан, Карачи.
СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ КИСЛОТНОГО СОСТАВА КАЗАХСТАНСКИХ ВИДОВ РАСТЕНИЙ РОДА ATRAPHAXIS
Аннотация. В данной статье представлены результаты количественного определения аминокислотного и жирно кислотного состава в надземной части растений рода Atraphaxis (Atraphaxis virgata, Atraphaxis pyrifolia, Atraphaxis spinosa, Atraphaxis muschketowii. Atraphaxis pungens), принадлежащего к семейству Polyganaceae, заготовленных в Алматинской област (Аксайское ущелье, Баканаский район, село Кокпек). В пяти видах растений рода Atraphaxis методом газожидкостной хроматографии было обнаружено по количественному содержанию 20 аминокислот, из которых 8 являются незаменимыми. Среди идентифицированных аминокислот большинство относятся к группе алифатических, в том числе содержащими окси группу и серосодержащие соединения. В двух видах растений рода Atraphaxis (A.virgata, A.pyrifolia) методом капиллярного электрофореза определено по количественному содержанию 13 аминокислот, из которых 7 являются незаменимыми. В A.рyrifolia массовую долю белка определили титриметрическим методом, за счет выявления количественного содержания общего азота на аппарате Кьелдаля. Количественное содержание жирных кислот в надземной части растений Atraphaxis (Atraphaxis virgata, Atraphaxis pyrifolia, Atraphaxis spinosa, Atraphaxis muschketowii.
Atraphaxis pungens) анализировали методом газожидкостной хроматографии. Получены содержание 8 ненасыщенных жирных кислот, где проявляется относительно высокое содержание, олеиновой, линолевой и пальмитиновой кислоты (C18:1, С18:2 и С16:0). Таким образом, выявлено, что в составе растительного сырья преобладают ненасыщенные жирные кислоты. Анализ кислотного состава сырья осуществлен методом газожидкостной хроматографии на приборе «CARLO ERBA- 4200» (Италия) и методом электрофареза на системе капиллярного электрофореза "Капель".
Ключевые слова: аминокислоты, жирные кислоты, курчавка, Polyganaceae Atraphaxis,
Volume 2, Number 455 (2023) хромотография, электрофорез
Введение
Виды растений рода Atraphaxis не были подвергнуты систематическому исследованию, в связи с этим изучение химического состава, разработка методов выделения потенциально биологически активных веществ, исследование биологической активности и разработка новых лекарственных средcтв и фитопрепаратов является актуaльным.
Растения рода Курчавка относятся к семейству Гречишные (Polygonaceae) лекарственные свойства которых лечат с глубокой древности.
В народной медицине имеет большое применение Ревень тангутский (Rheum palmatum L.), который также является представителем семейства Гречишных и используют как слабительное средство. Из этого растения готовят препарат хризорбин для лечения кожных заболеваний.
Ценное противоцинготное средство получают из черешков листьев ревеня волнистого (R.
undulatum), их ткани содержат витамины С, Е, В2 и каротин. Среди гречишных есть также красильные растения. Горец красильный (Polygonum tinctorium) дает 4–5 % индиго, корень спорыша также дает синюю краску. Желтую краску получают из корней щавеля конского (Rumex confertus), краску горчичного цвета — из щавеля каиегра. В бассейне реки Конго (Заир) культивируют щавель абиссинский (R. abyssinicus), дающий красную краску.
Среди гречишных есть ценные пищевые растения. Широко известной крупяной культурой является гречиха посевная. Плоды гречихи дают крупу — высококалорийный продукт, который содержит ценные для организма человека белки, углеводы, жиры, органические кислоты, витамины.
Из гречихи промышленным способом получают рутин, который назначают при атеросклерозе и гипертонии. Среди гречишных есть ценные медоносы: гречиха, горец змеиный (Polygonum bistorta) и др. Гречишный мед имеет тонкий вкус и темно-коричневый цвет.
В справочном издании «Растительные ресурсы СССР» представлена качественная и количественная характеристика растений семейства Polygonaceae.
М.К. Кукеновым и М.М. Мухамедьяровой впервые было проведенно исследование Казахстанских видов растения рода Atraphaxis. Ими была дана биоэкологическая характеристика, принадлежащая данному роду, с целью выявления новых флавоноидных растений. Было выявлено что растения рода Atraphaxis богаты флавоноидами.
В Казахстане род Atraphaxis встречается в Прибалхашье, на Алтае и Тарбагатае, в Джунгарском, Заилийском и Кунгей Алатау, в Чу-Илийских горах, Каратау, в Западном Тянь-Шане (Oscanov и др., 2018; Aitkulova и др., 2018; Aqzhigitova, 1982).
Химическое исследование видов Atraphaxis привели к выделению различных типов компонентов, включая фенольные соединения (Odonbayar и др., 2016), фенилпропаноиды, дубильные вещества (Aynehchi и др., 1981), 4-антрахиноны (Minghe Luo и др., 2017), флавоноиды (Odonbayar и др., 2016), флавоноидные гликозиды (Odonbayar и др., 2016)., 7-β-ситостерин, бензоиды.
Казахстанскими учеными Умбетовой А.К., Бурашевой Г.Ш. был исследован химически состав Atraphaxis virgata, где был определен количественный состав полисахаридов 1,12 %, органических кислот 3,45 %, танинов 3,59 %, флавоноидов 5,5 % (Umbetova A.K и др.,2018). В работе Умбетовой А.К при исследований Atraphaxis spinosa методом хромато-масс-спектроскопии установлено содержание липофильных компонентов – 26 органических соединений, где доминирует ди – (2-этилгeкcил) фталат (54,66 %) и β-cитocтepoл (13,11 %) (Umbetova и др., 2020).
Aминoкиcлoты ― opгaничecкиe coeдинeния, в мoлeкулe кoтopыx oднoвpeмeннo coдepжaтcя кapбoк-cильныe и aминныe гpуппы. Этo вeщecтвa пepвичнoгo cинтeзa, oни пpиcутcтвуют вo вcex opгaнax вcex pacтeний. Aминoкиcлoты пoдpaздeляютcя нa α, β, γ, σ и дp.
aминoкиcлoты, в зaвиcимocти oт pacпoлoжeния aминo- и кapбoкcигpупп. Из ниx нaибoлee pacпpocтpaнeны α, β и γ. α-aминoкиcлoты L-кoнфигуpaции ― вaжнeйшиe cocтaвныe чacти пeптидoв и бeлкoв. Тaкжe, в pacтeнияx мoгут coдepжaтьcя oднoocнoвныe диaминo- и двуxocнoвныe мoнoaминoкиcлoты.
Вещества первичного синтеза, они присутствуют во всех органах всех растений. Все аминокислоты, при низком значении рН, проявляют свойства кислот, при высоком ― оснований, а в изоэлектрической точке ― как цвиттер ион. В связи с этим аминокислоты являются амфолитами.
Аминокислоты с циклическими фрагментами (фенилаланин, гистидин, триптофан, пролин и др.) отличает высокое отрицательное значение удельного вращения (Chichibabin, 1957).
Для качественного и количественного определения аминокислот используют гель- фильтрацию, бумажную, тонкослойную, ионообменную и ВЭЖХ хроматографию (аминокислотный анализатор), а также электрофорез.
Изучение состава жирных кислот (ЖК) растений имеет важное практическое значение и вызывает научный интерес. Известно, что незаменимые ЖК не синтезируются в организме человека и животных и должны поступать с пищей. Они являются исходным продуктом для синтеза соединений, обладающих широчайшим спектром биологической активности (Gladishev, 2012).
В работе впервые представлены сравнительные данные содержания аминокислотного и жирно кислотного состава в изучаемых 5 видах Atraphaxis в зависимости от места произрастания и периода вегетации.
Материалы и методы
В качестве объекта исследования, выбраны надземная часть растения рода Atraphaxis, заготовленные в период цветения и плодоношения в районе Аксайского ущелья, в Баканаском районе и села Кокпек Алматинской области.
Целью работы является проведение сравнительного количественного анализа амино и жирно кислотного состава и определение содержания массовой доли белка в надземной части растений рода Atraphaxis
Определение аминокислотного и жирно кислотного состава сырья осуществлен методом газожидкостной хроматографии на приборе «CARLOERBA-4200» (Италия), массовую долю протеиногенных аминокислот в форме фенилизотиокарбамильных производных (ФТК- производных) в растительном сырье анализировали с помощью капиллярного электрофореза.
Результаты и обсуждение
Cведения об аминокислотах, синтезируемых растениями, говорят об их функциях в аминокислотном обмене, фармакологической активности некоторых из них, особенно при формировании факторов противоинфекционной защиты организма при заболеваниях верхних дыхательных путей (Buhanova, 2015; Drozdova и др., 2015).
Для определения аминокислот в экстракте 1 г aнaлизируeмoгo вeщecтвa, гидрoлизуют в 5 мл 6 Н coлянoй киcлoты при 1050C в тeчeниe 24 чacoв. Пoлучeнный гидрoлизaт упаривали до минимального объема нa рoтoрнoм иcпaритeлe при тeмпeрaтурe 40–500C и дaвлeниeм 1 aтмocфeрa.
Далее наносили на колонку с ионнобменной смолой Дауэкс Н-8, 200–400 меш, аминокислоты связываются в результате катионного обмена. Для элюирования аминокислот колонку промывали 6Н раствором NH4OH, элюат объединяли и упаривали. К полученной смеси добавляли 1 мл свежеприготовленного ацилирующего агента. Для разделения ацетилпроизводных аминокислот использовали колонку из нержавеющей стали размером 400х3 мм, заполненную полярной смесью:
0,31 % карбовакса 20 М, 0,28 % силара 5 СР и 0,06 % лексана на хромосорбе WAW 120–140 меш.
Coдeржимoe тщaтeльнo пeрeмeшивaют и пo мeрe тoгo, кaк oтчeтливo oбрaзуeтcя 2 cлoя жидкocтeй – бeрут вeрxний (этиaцeтaтный) для гaзoxрoмaтoгрaфичecкoгo aнaлизa (Goryaeva, 1977), кoтoрый прoвoдили нa гaзo-жидкocтнoм xрoмaтoгрaфe «CARLOERBA-4200» (Италия).
Уcлoвия xрoмaтoгрaфирoвaния:
- тeмпeрaтурa плaмeннo-иoнизaциoннoгo дeтeктoрa – 3000C;
- тeмпeрaтурa иcпaритeля – 2500C;
- нaчaльнaя тeмпeрaтурa кoлoнки – 1100C;
- кoнeчнaя тeмпeрaтурa кoлoнки – 2500C;
- cкoрocть прoгрaммирoвaния тeмпeрaтуры кoлoнки: oт 1100C дo 1850C–1860C. При дocтижeнии тeмпeрaтуры кoлoнки 2500C oнa дoлжнa coxрaнятcя тaкoй дo пoлнoгo выxoдa вcex aминoкиcлoт.
Данные аминокислотного состава сырья представлены в таблице 1.
Таблица 1 – Сравнительный анализ аминокислот в исследуемых видах рода Atraphaxis Аминокислоты Содержание, %
А.spinosa,
Баканас, А.virgata A. pyrifolia, Кокпек A.
muschkA. pungens Баканас, Аксай, Баканас, Кокпек,
Volume 2, Number 455 (2023) цветения цветения цветения цветения плодоно
шения цветения плодоно
шения etowii цветения Аланин 9,022 0,608 0,546 0,292 0,844 8,845 0,817 8,969 0,622 Глицин 3,843 0,305 0,205 0,380 0,305 3,453 0,319 3,476 0,265 Валин 2,639 0,200 0,182 0,274 0,190 3,150 0,291 3,142 0,182 Лейцин 4,902 0,450 0,314 0,320 0,368 3,637 0,336 3,654 0,338 Изолейцин 4,627 0,370 0,295 0,280 0,315 3,248 0,300 3,231 0,319 Треонин 2,175 0,198 0,170 0,263 0,171 3,009 0,278 3,030 0,150 Серин 3,684 0,255 0,288 0,345 0,306 3,897 0,360 3,899 0,254 Пролин 6,701 0,548 0,398 0,506 0,412 5,684 0,528 5,771 0,462 Метионин 0,870 0,100 0,04 0,074 0,060 0,898 0,083 0,891 0,060 Аспарагиновая
кислота 9,515 0,978 1,450 1,348 1,055 15,190 1,403 15,153 0,858 Цистин 0,348 0,090 0,018 0,020 0,012 0,2598 0,024 0,245 0,024 Фенилаланин 31,349 0,300 0,306 0,292 0,220 3, 313 0,306 3, 342 0,216 Глютаминовая
кислота 32,027 1,284 2,640 2,510 2,456 28,313 2,615 28,412 2,208 Орнитин 0,0145 0,009 0,001 0,002 0,001 0,0216 0,002 0,022 0,001 Тирозин 3,336 0,233 0320 0,334 0,258 3,811 0,352 3,832 0,230 Гистидин 2,639 0,198 0,172 0,200 0,160 2,317 0,214 2,284 0,182 Аргинин 3,974 0,278 0,332 0,542 0,325 6,149 0,568 6,194 0,274 Лизин 3,046 0,25 0,250 0,305 0,200 3,540 0,327 3,498 0,21 Триптофан 5,802 0,07 0,067 0,080 0,062 0,909 0,084 0,924 0,04 Оксипролин 0,0145 0,020 0,001 0,001 0,001 0,021 0,002 0,022 0,001
Согласно приведенным данным в таблице 1 в надземной части растений рода Atraphaxis было обнаружено по количественному содержанию 20 аминокислот, из которых 8 являются незаменимыми (треонин, валин, метионин, изолейцин, лейцин, фенилаланин, лизин, триптофан). Среди идентифицированных аминокислот большинство относятся к группе алифатических. Алифатические кислоты представлены 8 моноаминокарбоновыми кислотами (глицин, аланин, валин, изолейцин, лейцин), в т.ч.
содержащими оксигруппу (треонин, серин) и серосодержащими (метионин, цистин) соединениями. Моноаминодикарбоновые кислоты представлены аспарагиновой (аспаратат) и глутаминовой кислотами (глутамат), диаминомоно-карбоновые кислоты ― лизином, аргинином и орнитином. Из ароматических аминокислот обнаружены тирозин, фенилаланин и триптофан. Гетероциклические кислоты представлены гистидином, пролином, оксипролином.
Низкое содержание аминокислот, таких как, оксипролиновая и орнитиновая кислоты наблюдаются во всех видах растения рода Atraphaxis.
Известно, что глутаминовая кислота участвует в поддержании дыхания мозговых клеток, стимулирует окислительные процессы. Аланин представляет интерес как эффективное средство профилактики ишемических нарушений в мозге (Sampieva, 2010).
Лейцин, метионин, аспарагиновая и глутаминовая кислоты оказывают положительное влияние на сердечно-сосудистую систему, также применяются при аритмиях, гипоксиях и заболеваниях центральной нервной системы (Shilova, 2008).
Ниже нами приведена сравнительная диаграмма (рисунок 1) количественного анализа ами-нокислот в составе растения A.virgata и A.pyrifolia.
Рисунок 1 - Сравнительная диаграмма количественного анализа аминокислот методом ГЖХ в составе растения A.virgata и A.pyrifolia.
Массовою долю протеиногенных аминокислот в форме фенилизотиокарбамильных производных (ФТК-производных) в растительном сырье анализировали с помощью капиллярного электрофореза. Сущность метода заключается в разложении пробы для анализа кислотным гидролизом с переводом аминокислот в свободные формы, получении ФТК-производных аминокислот, дальнейшем их разделении и количественном определении методом капиллярного электрофореза.
Система капиллярного электрофореза (далее-прибор) с источником высокого напряжения положительной полярности, оснащенная кварцевым капилляром длиной 75 см и внутренним диаметром 50 мкм, фотометрическим или спектрофотометрическим детектором, позволяющим проводить измерения при длине волны от 250 до 260 нм, и компьютером со специальным программным обеспечением для регистрации и обработки электрофореграмм, система капиллярного электрофореза "Капель" с программным обеспечением "Эльфоран".
Для определения аминокислот анализируемую пробу массой (0,100±0,001) г помещают в кварцевую или фарфоровую чашку, добавляют 5,0 см свежеприготовленной окислительной смеси и выпаривают при постоянном перемешивании в струе теплого воздуха при температуре 60°С досуха. Сухой остаток количественно переносят в виалу для гидролиза, используя 10,0 см соляной кислоты. Виалу для гидролиза герметично закрывают завинчивающейся крышкой и перемешивают.
Виалы для гидролиза устанавливают в сушильный шкаф. Гидролиз проводят при температуре 110°С в течение 14–16 ч. По окончании гидролиза виалы для гидролиза вынимают из шкафа и охлаждают до комнатной температуры. Содержимое виал для гидролиза после охлаждения фильтруют через фильтры "синяя лента".
В стеклянные бюксы вместимостью 10–15 см отбирают по 0,05 см подготовленных гидролизатов. Растворы выпаривают досуха в струе теплого воздуха. В каждый бюкс с сухими остатками добавляют 0,15 см раствора углекислого натрия и 0,3 см раствора ФИТЦ. Тщательно перемешивают до растворения осадка, закрывают крышкой и оставляют на 35 мин при комнатной температуре. Затем растворы выпаривают досуха в струе теплого воздуха. Подготовленные растворы переносят в пробирки типа Эппендорф, центрифугируют в течение 5 мин при скорости вращения 5000 об/мин.
Для каждого подготовленного раствора регистрируют не менее двух электрофореграмм.
По окончании регистрации проверяют правильность автоматической разметки пиков. Используя программное обеспечение, проводят идентификацию аминокислот в пробе по совпадению времен их миграции в пробе и контрольном растворе при ширине окна идентификации не более 5 %.
В таблице 2 указаны значения аминокислотного состава, анализированные методом электрофореза надземной части A.virgata и A.pyrifolia заготовленных в разных регионах Алматинской области.
Таблица 2 – Сравнительная таблица аминокислотного состава надзменой части A.virgata и A.pyrifolia
№ Аминокислоты
Процентная доля, %
A.virgata., Аксайское ущелье,
период цветения A.pyrifolia, с.Кокпек, период плодоношение 0,501
1,52 2,53
Процентная доля, %
A.virgata A.pyrifolia
Volume 2, Number 455 (2023)
1 Аргинин Arg 2,805 2,254
2 Лизин Lys 0,198 0,525
3 Тирозин Tyr 0,094 0,401
4 Фенилаланин Phe 0,160 0,494
5 Гистидин His 0,082 0,303
6 Лейцин+изолейцин Leu+ Ile 0,200 0,648
7 Метионин Met 0,038 0,117
8 Валин Val 0,186 0,679
9 Проллин Pro 0,240 1,019
10 Треонин Tyr 0,166 0,463
11 Серин Ser 0,172 0,463
12 Аланин Ala 0,182 0,494
13 Глицин Gly 0,162 0,494
Согласно полученным данным, в A.virgata и A.pyrifolia обнаружены по количественному содержанию 13 аминокислот, из которых 7 являются незаменимыми (валин, лейцин, изолейцин, метионин, лизин, треонин, фенилаланин). Алифатические кислоты представлены 4 моноамино-карбоновыми кислотами (аланин, валин, изолейцин, лейцин), в том числе содержащими оксигруппу (треонин, серин) и серосодержащими (метионин) соединениями.
Из ароматических аминокислот обнаружены тирозин, фенилаланин. Гетероциклические кислоты представлены гистидином, проллином.
Белок (протеин) — это органическое соединение, являющееся исключительно важным питательным веществом, определяющим ценность растительного сырья. Белки ― это высокомолекулярные органические соединения, построенные из аминокислот, соединенных между собой пептидными связями. Все белки, независимо от структуры, свойств и функций, построены из одних и тех же аминокислот, в состав которых входит азот.
Содержание белка в растительном сырье определяется титриметрическим методом за счет определения количественного содержания общего азота на аппарате Кьелдаля. Метод Къельдаля является наиболее точным, который заключается в окислении (сжигании) органических веществ концентрированной серной кислотой при кипячении в присутствии катализатора. Содержание белка определяют по количеству азота.
Для определения количественного содержания белка навеску из гомогенной массы берут с таким расчетом, чтобы в пробе содержалось примерно 20...25 мг азота. Метод основан на сжигании органических компонентов сырья в присутствии серной кислоты. Выделяющийся при этом азот улавливается серной кислотой и образуется сульфат аммония. При добавлении едкого натра выделяется аммиак, который отгоняют в раствор серной кислоты. Выделившийся аммиак определяют титрованием. Для ускорения сжигания применяют катализатор: смесь сернокислой меди и сернокислого натрия.
В колбу Къельдаля переносят навеску, которую берут на аналитических весах в лодочку из алюминиевой фольги или под пергаментной бумаги, добавляют цилиндром 20 см3 серной кислоты, вливая ее постепенно по стенкам колбы и смывая частицы продукта. В колбу добавляют катализатор (0,5 г сернокислой меди и 7,5 г сернокислого натрия), устанавливают ее в наклонном положении в вытяжном шкафу в нагревательный прибор, приливают 1 см3 этилового спирта. Колбу закрывают грушевидной стеклянной пробкой и осторожно нагревают. При образовании пены в первый период окисления колбу следует снять с нагревательного прибора и дать пене осесть, а затем продолжить нагревание, следя за тем, чтобы пена не попала в горло колбы. После прекращения пенообразования нагрев усиливают. Степень нагревания считают достаточной, когда кипящая кислота конденсируется в средней части горлышка колбы Къельдаля.
Время от времени содержимое колбы перемешивают, смывая частицы со стенок колбы.
Нагревание продолжают до тех пор, пока жидкость не станет бесцветной (слегка голубоватой) и совершенно прозрачной. Содержимое колбы охлаждают, осторожно по стенке добавляют 50 см3 дистиллированной воды, перемешивают и охлаждают.
В коническую колбу вместимостью 250 см3 пипеткой отмеривают 40 см3 0,05 моль/дм3 серной кислоты, добавляют четыре капли индикатора, перемешивают и погружают наконечник, соединенный с холодильником, в кислоту на 1,5...2 см.
В перегонную колбу переносят содержимое колбы Къельдаля, ополаскивая ее несколько раз, 100...150 см3 дистиллированной воды, опускают красную лакмусовую бумажку и соединяют с холодильником с помощью каплеуловителя. Отмеривают цилиндром 80 см3 33%-ного раствора гидроокиси натрия и через делительную воронку вливают его в перегонную колбу. Сразу же после добавления щелочи закрывают кран делительной воронки для предотвращения потерь аммиака.
Содержимое колбы нагревают до кипения, при этом необходимо избегать пенообразования.
Продолжают перегонку до тех пор, пока жидкость не станет вскипать толчками. Нагрев регулируют таким образом, чтобы продолжительность дистилляции была не менее 20 мин. Перед окончанием перегонки опускают коническую колбу так, чтобы конец наконечника оказался над поверхностью раствора серной кислоты, и продолжают перегонку еще 1...2 мин. Нагревание прекращают. В коническую колбу смывают небольшими порциями дистиллированной воды остатки раствора серной кислоты с внутренней и внешней поверхностей наконечника. Дистиллят титруют 0,1
В таблице 3 приведены значение белка в A.pyrifolia, произрастающих в с.Кокпек, отобранных в период плодоношения.
Таблица 3 – Содержание белка в Atraphaxis pyrifolia
№ Наименование показателя Процентная доля, %
1 Массовая доля белка 6,93
Жирные кислоты ― алифатические одноосновные карбоновые кислоты с открытой неразветвленной цепью из четного числа атомов углерода, в этерифицированной форме содержащиеся в веществах липидной природы растительного и животного происхождения.
Полиненасыщенные жирные кислоты с 18 атомами углерода (линолевая, линоленовая) являются предшественниками физиологически значимых соединений. Основным источником полиненасыщенных жирных кислот является пища, в том числе и растительные продукты (Titov, 2006).
Содержание жирных кислот определяли на газо-жидкостном хроматографе «Карло-Эрба- 4200» (Италия-США) после предварительного извлечения из исследуемого материала смесью хлороформ-метанол в соотношении 2:1 в течение 5 мин Метилирование проводили в присутствии метанола и хлористого ацетила при температуре-60–700С в специальной системе в течение 30 минут. Затем метанол выпаривали на роторном испарителе, а образец экстрагировали гексаном.
Хроматографическое разделение проводили при следующих условиях: температура инжектора 1880С, температура детектора 2300С, температура термостата 1880С; содержимое колонки:
полиэтилен-гликольдипинат (20 %) на целите -545 (таблица 4).
Таблица 4 – Содержание жирных кислот в надземной части некоторых видов растений родов: курчавка (Atraphaxis)
Название кислоты Содержание, %
spinosa A. A. virgata A.
muschk etowii
pyrifolia, A.
Кокпек,
A.pungens Баканас, цветения Аксай,
цветения Баканас
цветения Кокпек,
Цветения Плодон ошения Цветения Плодоношения
Миристиновая
(С14:0) 1,1 2,1 0,4 1,0 1,1 1,8 1,3 1,2 1,1
Пентадекановая
(С15:0) 1,8 2,0 0,6 0,7 0,8 0,7 0,9 0,8 1,8
Пальмитиновая
(С16:0) 6,5 8,1 6,5 11,2 16,3 11,2 12,3 11,7 6,5
Пальмиталеинова я (С16:1)
0,7 1,5 0,4 0,1 1,0 0,1 0,2 0,1 2,9
Стеариновая
(С18:0) 2,9 4,2 3,4 5,4 4,2 5,4 6,1 5,7 0,7
Олеиновая
(С18:1) 64,4 54,4 62,0 50,5 22,1 50,5 49,3 49,1 64,4
Линолевая
(С18:2) 21,5 26,2 26,0 30,5 15,3 30,5 29,2 31,8 21,3
Volume 2, Number 455 (2023) Линоленовая
(С18:3) 1,3 15 0,7 0,5 39,2 0,0005 0,7 0,6 1,3
В результате количественного анализа жирных кислот, нами были обнаружены следующие наблюдения: приведенные данные в таблице 4 свидетельствуют об относительно высоком содержании, олеиновой, линолевой и пальмитиновой кислоты (C18:1, С18:2 и С16:0) в надземной части рода Atraphaxis, Таким образом, было выявлено, что в составе растительного сырья преобладают ненасыщенные жирные кислоты.
Для наглядности, полученные значения содержания отдельных жирных кислот вынесены в диаграмму, которая иллюстрирует соотношение жирных кислот в A.virgata и A.pyrifolia (рисунок 2).
Рисунок 2. Диаграмма содержания жирных кислот в A.virgata и A.pyrifolia
Из экспериментальных данных следует, что для более углубленного исследования химического состава растений Atraphaxis мы отобрали A.virgata и A.pyrifolia загатовленных в Аксайском ущелье и села Копек Алматинской области. Растительное сырье подвергли к систематическому разделению для определения содержания первичных и вторичных метаболитов.
Заключение
В результате сравнительного количественного анализа состава пяти видов растений рода Atraphaxis (Atraphaxis virgata, Atraphaxis pyrifolia, Atraphaxis spinosa, Atraphaxis muschketowii.
Atraphaxis pungens) в зависимости от места произрастания и периода вегетации определено содержание белка в A.pyrifolia (6,93 %), установлен амино-жирно кислотный состав, современными физико-химическими методами анализа.
Методом газожидкостной хроматографии было обнаружено по количественному содержанию 20 аминокислот, из которых 8 являются незаменимыми (треонин, валин, метионин, изолейцин, лейцин, фенилаланин, лизин, триптофан). Среди идентифицированных аминокислот большинство относятся к группе алифатических представлены 8 моноаминокарбоновыми кислотами (глицин, аланин, валин, изолейцин, лейцин), в т.ч. содержащими оксигруппу (треонин, серин) и серосодержащими (метионин, цистин) соединениями. Моноаминодикарбоновые кислоты представлены аспарагиновой (аспаратат) и глутаминовой кислотами, диаминомонокарбоновые кислоты – лизином, аргинином и орнитином. Из ароматических аминокислот обнаружены тирозин, фенилаланин и триптофан. Гетероциклические кислоты представлены гистидином, пролином, оксипролином.
Массовою долю протеиногенных аминокислот в растительном сырье Atraphaxis (A.virgata, A. pyrifolia) анализировали на капиллярном электрофорезе, было обнаружено по количественному содержанию 13 аминокислот, из которых 7 являются незаменимыми (валин, лейцин, изолейцин, метионин, лизин, треонин, фенилаланин). Алифатические кислоты представлены 4 моноамино- карбоновыми кислотами (аланин, валин, изолейцин, лейцин), в том числе содержащими оксигруппу (треонин, серин) и серосодержащими (метионин) соединениями. Из ароматических аминокислот
0 10 20 30 4050 60
Процентная доля, %
Кислоты A.virgata A.pyrifolia
